Меню Рубрики

Как правильно брать кровь у свиней

Кровь – жидкая ткань организма, выполняющая ряд функций, одной из которых является транспортная. Осуществляя в организме транспорт химических веществ, происходит интеграция биохимических процессов в различных клетках и межклеточных пространствах в единую систему. Правильно отобранные образцы крови предоставляют возможность мониторинга нозологического профиля поголовья, уровня метаболических процессов, обеспеченности организма витаминами, минералами, незаменимыми аминокислотами и т.д. Для получения достоверных результатов необходимо свести к минимуму возможность появления артефактов, обусловленного нарушением правил отбора проб крови, ее стабилизирования и транспортировки.

Иглы перед взятием крови от каждого животного обязательно стерилизуют кипячением, либо применяют стерильные. Оптимальным вариантом является использование шприц-пробирок или вакуумных пробирок. При их использовании кровь не контактирует с внешней средой, т.е. остается асептической и не подвергается окислению кислородом воздуха, тем самым предупреждается агрегация тромбоцитов и образование сгустков в образцах, предназначенных для полного определения клеточного состава крови. Место пункции необходимо обработать 70%-ным спиртовым раствором или 3%-ным раствором карболовой кислоты. При заборе крови нужно следить, чтобы она стекала по стенке в пробирку струей, а не каплями. Кровь, взятая каплями и вспененная, быстрее гемолизируется и часто дает неправильные результаты показаний при лабораторных исследованиях.

Таблица 1. Влияние гемолиза на результаты исследований биохимических компонентов сыворотки крови

Существует несколько способов отбора проб крови у свиней. Среди них можно выделить:

Данный способ подходит, если необходимо отобрать небольшое количество крови (2-3 мл). Для асептического отбора используется шприц с иглой толщиной 0,8 мм (типа Луер), и отбор крови осуществляется при внутривенном введении иглы, в противном случае происходит бакобсемененность образца. Вены уха свиньи, как правило, расположены в трех точках уха и легко различимы. Одна вена располагается вдоль внешнего края уха, другая – посередине, третья – около 2 см от медиального края. Хвостовые вены находятся в вентральной части хвоста. Для этого способа взятия крови требуются иглы 0,8х25 мм.

После отбора крови необходимо удалить иглу, а место пункции пережать лещеткой, лигатурой или большим пальцем руки на 2-3 минуты. Опасность метода состоит в том, что лигатура может произвольно соскочить и произойдет обескровливание организма животного.

Это безопасный и быстрый способ отбора крови, требующий правильной фиксации животного. Для этого используют металлическую петлю или веревку, при помощи которых животное фиксируется в стоячем положении. При фиксации голова поросенка должна быть поднята вверх таким образом, чтобы шея образовала прямую линию, а кожа была натянута.

Отбор крови производят с правой стороны (при дыхательной недостаточности, развивающейся у свиней при пневмонии или плевропневмонии возможно при введении иглы повреждение левого диафрагмального или блуждающего нерва, поэтому рекомендуется введение иглы справа). Точка пункции находится на краю плечеголовной мышцы – внешнего края яремного желоба, на линии между краем плечевого сустава и рукояти грудной кости (рис 1, 2). Вторая линия проходит от рукояти грудной кости к основанию уха. Глубина прокола для взрослых животных составляет от 75 до 100 мм, для маленьких поросят – 40-75 мм.

Рис. 1. Поверхностные мышцы шеи свиньи

Рис. 1.1. Сеть венозных сосудов шеи

Рис. 2. Место пункции яремной вены

Рис. 3. Забор крови из яремной вены

После введения иглы под кожу поршень шприц-пробирки необходимо отвести назад для создания в ней отрицательного давления. Игла вводится в дорсомедиакаудальном направлении (рис. 3). Когда кровь начинает поступать в пробирку, необходимо следить, чтобы она не вспенивалась, не капала, не билась о дно, а плавно стекала по стенке с целью предупреждения гемолиза эритроцитов.

Если игла с первого раза не попала в яремную вену, ее необходимо отвести назад и вводить в слегка измененном произвольном направлении. Если и в этот раз цель не достигается, иглу необходимо заменить. При наличии кровотечения после извлечения иглы, место пункции необходимо прижать большим пальцем руки до ее полной остановки.

Свиней массой о С, исключая воздействие света и тепла. Если сыворотка будет исследована позже, в течение недели или на следующей неделе, ее необходимо заморозить при -20 о С и исследовать сразу же после разморозки.

Таким образом, если целью отбора крови является получение достоверных результатов, необходимо четко следовать методическим требованиям при отборе, хранении и транспортировке проб. В современных условиях (насыщенности ветеринарной программы, удаленности лаборатории от производства, отсутствия необходимого инвентаря и оборудования) этого сделать практически невозможно. Поэтому при интерпретации полученных из лаборатории результатов, необходимо учитывать все факторы, которые могут на них повлиять. Четкой границы, дифференцирующей патологию от физиологической нормы, у свиней не существует. На полученные из лаборатории результаты можно ориентироваться, но 100% им доверять нельзя.

источник

Процент того, сколько в свинье крови, зависит от породы животного. У сальных их меньше, чем у мясных. Но в среднем её масса составляет около 4,5% от веса. Но на выходе количество спущенной жидкости окажется на порядок меньше, т.к. некоторая часть оседает в тканях.

Главный «насос» в теле животного — четырехкамерное сердце (состоит из 4 отделений 2 предсердий и 2 желудочков). Разделено на 2 половины. От сердца кровь течет по артериям, достигая самых мелких сосудов — капилляров. Всего у свиньи 2 круга кровообращения — большой и малый:

  1. Большой охватывает все необходимые органы. Кровь выходит из левого желудочка и возвращается в правое предсердие.
  2. Малый нужен для снабжения легких. Жидкость покидает правый желудочек и возвращается в левое предсердие.

Средняя частота сокращений (ударов) — 60-90 в мин. Кровь снабжает ткани «чистой» кровью, потом происходит тканевый обмен. Жидкость забирает углекислый газ и двигается обратно в сердце. Такая кровь приобретает синюшный оттенок, течет по венам. Кровь состоит из плазмы, жидкой части, и телец (форменных частиц). Это эритроциты, лейкоциты и тромбоциты. Функции их такие же, как у человека.

Техника взятия крови у свиней нужна для получения образцов на лабораторный анализ. Чаще этим занимаются ветеринары, но если хозяйство находится вдали от ветклиники, фермер может сам провести процедуру. Понадобится:

  • шприц в зависимости от возраста и размера;
  • спирт для дезинфекции;
  • ватные тампоны;
  • стерильная пробирка для образца;
  • средства фиксации животного.

Потребуется помощник, который дополнительно зафиксирует животное. Взятие крови у свиней из яремной вены делают 2-мя способами: шприцом и вакуумной пробиркой. Способ подходит и для поросят, полученный образец около 20-30 мл. Вена находится на шее, рекомендуют делать забор справа. Затем место введения прижимают пальцем, чтобы предупредить кровотечение.

Этот метод относят к самым простым, потому что вены хорошо прощупываются, забор возможен шприцом и минимум рисков для животного. Среди недостатков — надежная фиксация, чтобы скот не мог делать резких движений.

Практика переработки крови забитого скота существует. Некоторые частично пьют ее сырой, другие жарят на сковороде или готовят кровяную колбасу. Также из жидкости изготавливают гематоген — сладкую добавку для повышения уровня гемоглобина.

Ветеринары не рекомендуют пить кровь свиней в свежем виде. У животных много паразитов, которые могут жить в теле человека. Нельзя исключать наличие гельминтов. Проверка крови на паразитов не проводится в штатных лабораториях на рынках, поэтому ее продавать запрещено.

Владельцы скота могут использовать сырье по-разному. Если они уверены в здоровье животного, то могут пить. Если нет, кровь выливают как отходы. Несмотря на странность жидкости, она обладает хорошей пищевой ценностью.

В ней много гемоглобина, который показан людям с малокровием. Раньше процедура отпития крови носила ритуальный характер и была профилактическим напитком в народной медицине. Сегодня лучше предпочесть проверенные источники гемоглобина.

У свиньи процент крови составляет 4,5% от веса. При забое получают несколько меньше. В домашнем хозяйстве из нее готовят блюда и напитки либо выливают, вовсе не используя. Реализовать кровь скота на рынках и базарах запрещено, ведь ее не проверяет ветлаборатория. Более опасна свиная жидкость, т.к. паразиты остаются в организме человека.

источник

(УТВЕРЖДЕНЫ Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР 24 июня 1971 г. взамен Правил, утвержденных 4 июля 1958 г.)

1. При необходимости определить или подтвердить причину заболевания или гибели животных (включая птиц, зверей, пчел, рыб) при подозрении на инфекционную или инвазионную болезнь или на отравление ветеринарный врач (фельдшер) обязан взять соответствующий патологический материал и направить его в ветеринарную лабораторию для исследования.

Кроме того, в лабораторию направляют корма для различных видов исследований, а также кровь и другой материал от животных для биохимических анализов.

Во всех случаях взятия и пересылки материала специалист обязан руководствоваться изложенными ниже правилами, а также соответствующими инструкциями по борьбе с болезнями животных.

Взятие и пересылка патологического материала для бактериологического и вирусологического исследования

Взятие и пересылка патологического материала для бактериологического и вирусологического исследований

2. Патологический материал необходимо брать стерильными инструментами в стерильную посуду. Поверхность органа (ткани), от которого берут патологический материал, на месте разреза следует обжечь над пламенем или прижечь нагретой металлической пластинкой.

3. Патологический материал должен быть взят как можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время года. Начавшееся разложение трупа может сделать его негодным для исследования.

Патологический материал отправляют в лабораторию в неконсервированном виде; в том случае, если невозможно доставить его в лабораторию в течение ближайших 24-30 часов, патологический материал посылают только в консервированном виде.

4. Для бактериологического исследования патологический материал (органы или их части) консервируют 30%-ным водным раствором химически чистого глицерина. Воду предварительно стерилизуют кипячением или автоклавированием в течение 30 минут. Материал можно консервировать также в стерильном вазелиновом масле. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве, в 4-5 раз превышающем его объем.

5. Материал, направляемый для вирусологических исследований, консервируют 30-50%-ным раствором химически чистого глицерина на физиологическом растворе поваренной соли. Физиологический раствор предварительно стерилизуют в автоклаве при 120° в течение 30 минут.

6. Небольшие трупы павших животных (поросят, ягнят, телят), а также трупы мелких животных лучше посылать целыми в непроницаемой таре.

7. Трубчатые кости посылают на исследование в целом виде, с неповрежденными концами, тщательно очистив их от мышц и сухожилий. Кости завертывают в марлю пли полотно, смоченное дезинфицирующей жидкостью (5%-ным раствором карболовой кислоты). Кости можно также посыпать поваренной солью и завернуть в полотно или марлю.

8. Кишечник перед посылкой для бактериологического и вирусологического исследований освобождают от фекальных масс, а концы кишечника перевязывают. На исследование посылают части кишечника с наиболее характерными патологическими изменениями. Кишечник помещают в банки с 30-40%-ным водным раствором глицерина или насыщенный водным раствором поваренной соли. Объем консервирующей жидкости должен превышать объем взятого материала в 5-7 раз.

9. Кал для исследования отправляют в стерильных стаканах, пробирках или банках, которые хорошо закрывают пергаментной бумагой. От трупов животных кал можно послать в отрезке невскрытого кишечника, завязанного с обоих концов. Кал в лабораторию должен быть доставлен не позднее 24 часов после его взятия.

10. При посылке для исследования участков кожи берут наиболее пораженные кусочки ее размером 10 10 см. Кусочки кожи посылают в стерильной, герметически закупоренной посуде.

11. Кровь, гной, слизь, экссудат, мочу, желчь и другой жидкий патологический материал для бактериологического и вирусологического исследований посылают в запаянных пастеровских пипетках, стерильных пробирках или во флаконах, хорошо закрытых стерильными резиновыми пробками.

12. Кровь, гной, выделения из различных полостей, естественных отверстий и др. посылают для микроскопического исследования (для обнаружения в них микробов, кровепаразитов и для определения лейкоцитарной формулы) в виде мазков.

Предметные стекла предварительно кипятят в течение 10-15 минут в 1-2%-ном водном растворе соды, затем хорошо промывают чистой водой и насухо вытирают. Сухие стекла помещают в раствор спирт-эфира, взятых в равных частях, где и хранят до употребления.

У животных кровь берут из вены ушной раковины или края верхушки уха, у птиц — с поверхности гребня или подкрыльцовой вены. Шерсть на месте взятия крови выстригают или выбривают, кожу тщательно протирают ватными тампонами, смоченными сначала спиртом и затем эфиром. Инструменты (иглы, скальпель) должны быть стерильными.

Первую каплю крови удаляют стерильной ватой (исключение делается при исследовании крови на гемоспоридиозы, когда берут для мазка первую каплю крови), а следующую свободно выступившую каплю крови берут на предварительно подготовленное предметное стекло путем быстрого и легкого прикосновения к капле поверхностью стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают между пальцами левой руки в горизонтальном положении. К левому краю капли прикасаются под углом 45° шлифованным краем другого предметного (или покровного) стекла. Как только капля равномерно распределится по ребру этого стекла, его быстро проводят по поверхности предметного стекла слева направо, не доводя его до края на 0,5-1 см. Ширина мазков должна быть уже предметного стекла. Для каждого нового мазка берут свежую каплю крови.

Готовые мазки крови высушивают на воздухе; подсушивать их над пламенем или на солнце не рекомендуется. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке теплого стерилизатора.

Метод фиксации мазков зависит от цели исследования (см. специальную часть Правил).

Правильно приготовленные мазки крови должны быть тонкими, равномерными и достаточной длины. На высушенных мазках и отпечатках острым предметом делают надпись с указанием номера или клички животного и даты приготовления мазка.

Мазки из тканей, гноя, органов и различных выделений готовят путем размазывания материала на предметном стекле стерильной палочкой или ребром другого предметного стекла до тонкого слоя. Частицы органов плотной консистенции, твердые узелки, а также вязкий материал целесообразно заключать между двумя предметными стеклами. После растирания помещенного между ними материала стекла разъединяют в противоположные стороны в горизонтальном направлении, в результате чего получаются два довольно тонких мазка. Иногда получают так называемые препараты-отпечатки. Для этого вырезанный острым скальпелем кусочек органа захватывают пинцетом и свободной поверхностью кусочка делают на стекле несколько тонких отпечатков.

Читайте также:  Как подготовить раствор фитоспорина для пролива почны при высадке рассады помидор

13. У лошадей, крупного рогатого скота, верблюдов, оленей, овец и коз кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Иглы перед взятием крови от каждого животного обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, и кожу дезинфицируют спиртом или 3%-ным раствором карболовой кислоты. Нужно следить, чтобы кровь стекала по стенке в пробирку струей, а не каплями. Кровь, взятая каплями и вспененная, скорее гемолизуется и часто дает неправильные результаты показаний при исследовании. Нельзя допускать, чтобы кровь попадала на землю. Для этого надо пользоваться тазиком с дезинфицирующей жидкостью, куда спускают первую порцию крови.

У свиней кровь берут из уха (иглой или шприцем) или из кончика хвоста. Хвост предварительно обмывают водой с мылом и дезинфицируют спиртом или 3%-ным раствором карболовой кислоты, а затем кончик отрезают ножницами. После взятия крови копчик хвоста обрабатывают йодом, перевязывают или прижигают.

У птиц кровь берут из вены крыла или из гребешка.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования от крупного рогатого скота, лошадей и других крупных животных, овец, свиней кровь берут в количестве 7-10 мл.

Взятую кровь выдерживают около часа при 30-35° для свертывания, а затем выносят в прохладное помещение для отстаивания. Через 10-12 часов отстоявшуюся сыворотку переливают в другие пробирки. Если сыворотка недостаточно отстоялась или верхний слой сгустка плотно прилегает к стенкам пробирки и отстаивание начинается снизу, то сгусток отделяют от стенок пробирки тонкой предварительно прокаленной и остывшей проволокой.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, ее необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки. Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью (сывороткой). Сыворотку можно консервировать также высушиванием.

Для высушивания сыворотку наносят на фильтровальную бумагу размером 5 5 см в количестве 0,4 мл и выдерживают в комнате при рассеянном свете до полного высыхания. После этого на каждой бумаге с высушенной сывороткой делают соответствующие записи простым карандашом и завертывают в пергаментную бумагу (каждую пробу отдельно), а затем упаковывают в конверт и в таком виде отсылают в лабораторию.

В лаборатории каждую пробу сухой сыворотки помещают в пробирку, заливают 2 мл физраствора, помещают в термостат на 6-10 часов или оставляют в комнате на 24 часа и затем исследуют. Сухие сыворотки сохраняют свои антигенные свойства от 40 до 130 дней.

Для серологического исследования в лабораторию можно отправлять и цельную кровь, не отделяя сыворотку, но при условии, что в пути ее не будут встряхивать и она не подвергнется гемолизу.

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного. Пробы направляют с описью в двух экземплярах (см. Приложение 2).

Пробирки с сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзали.

14. Для патологогистологического исследования материал берут от свежих трупов или убитых животных. Нужно брать те органы и ткани, где обнаружены те или иные патологические изменения. Из разных участков патологически измененных органов (тканей) вырезают тонкие, небольшие кусочки, но не более 1-2 см толщиной. Вместе с пораженными участками ткани захватывают и граничащую с ней нормальную ткань.

При иссечении кусочка учитывают микроскопическое строение того или иного органа и ткани. Так, кусочки из почки берут с таким расчетом, чтобы попадали оба слоя — корковый и мозговой. Из органов, имеющих во всех частях одинаковое строение, при иссечении необходимо захватывать и их капсулы.

После взятия материал тотчас помещают в фиксирующую жидкость, объем которой должен в 10 раз превышать объем взятого материала. В качестве фиксирующей жидкости лучше всего использовать 10%-ный водный раствор продажного формалина. За неимением формалина можно использовать в качестве фиксирующей жидкости 96%-ный чистый спирт. При применении спирта толщина кусочков ткани не должна превышать 0,5 см.

Фиксирующую жидкость во всех случаях через сутки необходимо заменить свежей.

Патологический материал фиксируют в стеклянной посуде или в крайнем случае в глиняной.

Головной, спинной мозг и другие нервные ткани лучше фиксировать в 10%-ном нейтральном формалине. Нейтрализуется формалин прибавлением в продажный формалин сухого мела или углекислой магнезии до его объема. Для фиксации кусочков мозга можно использовать также 96%-ный спирт, жидкость Карнуа или смесь Буэн-Дюбоска (см. пункт 111).

В холодное время года во избежание промерзания при пересылке материал, профилированный в формалине, как указано выше, перекладывают в 30-50%-ный раствор глицерина, приготовленный на 10%-ном формалине, или в 70%-ный спирт, или в насыщенный раствор поваренной соли.

На банку с кусочками органов и тканей наклеивают ярлык с указанием номера или клички животного, а внутрь ее опускают этикетку из плотной бумаги или картона с написанным на ней простым (не химическим) карандашом номером животного.

Помещать в одну посуду несколько объектов исследования от разных животных можно только при том условии, если каждый из них завязывают в марлю вместе с отдельной этикеткой.

15. Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем (нефиксированном) виде отправляют для исследования в лабораторию только с нарочным. Посылаемый материал, особенно от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, должен быть тщательно упакован в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить возможность рассеивания инфекции в пути. Перед упаковкой материал необходимо завернуть в холст или мешковину, смоченную дезинфицирующим раствором (фенольного креолина, лизола, известкового молока), и уложить в ящик со стружками, мякиной или опилками.

16. Части органов, жидкости, отправляемые в лабораторию почтой в фиксированном или консервированном виде, должны быть помещены в герметически закупоренную стеклянную посуду с притертой стеклянной, пластмассовой, резиновой или корковой пробкой. Пробка должна быть закреплена проволокой или бечевкой и залита менделеевской замазкой (сургучом, смолкой, парафином или воском), чтобы укупорка была непроницаемой для жидкости. Укупоренную посуду вкладывают в прочный плотный ящик и хорошо обкладывают ватой, паклей, стружками, опилками или другими упаковочными материалами.

Кости обертывают целлофаном, полиэтиленовой пленкой или смоченными в дезрастворе марлей или полотном и также упаковываются в ящики.

17. При пересылке почтой или с нарочным патологического материала от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, или явно инфицированного материала упаковка должна гарантировать доставку материала в целости и исключить возможность рассеивания возбудителей инфекции. На лицевой стороне посылки вверху должна быть надпись «Осторожно — стекло» и «Верх».

18. Стеклянную посуду, в которой заключен посылаемый материал с подозрением на наличие особо опасных болезней (сап, сибирская язва, эмфизематозный карбункул, бруцеллез, туляремия, перипневмония крупного рогатого скота, чума крупного рогатого скота, чума свиней, псевдочума птиц, ящур, бешенство), обязательно упаковывают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют, или опечатывают, а затем упаковывают еще в деревянный ящик.

Если такой материал доставляют с нарочным, можно отправлять его в стеклянной, герметически закупоренной посуде, без металлической коробки, но в деревянном ящике.

19. На взятый патологический материал составляют сопроводительный документ (см. пункт 141).

Если при вскрытии посылки в лаборатории будут установлены несоответствие сопроводительному документу или порча патологического материала, об этом обязательно составляют акт, копию которого отправляют ветеринарному врачу, направившему материал в лабораторию.

20. Сибирская язва. При подозрении на сибирскую язву вскрывать трупы запрещается. Для исследования от трупа животного берут кровь из надреза уха, периферических сосудов или отрезают и отсылают в лабораторию ухо.

Если подозрение на сибирскую язву появилось в процессе вскрытия трупа, вскрытие тотчас же приостанавливают и для исследования посылают ухо, как указано ниже.

Подозрение на заболевание сибирской язвой свиней обычно возникает при наличии опухоли в области шеи. Если подозрение возникло во время вскрытия трупа свиньи, то дальнейшее вскрытие прекращают, а для бактериологического исследования берут участки отечной соединительной ткани, заглоточные лимфатические узлы.

Место надреза предварительно тщательно дезинфицируют и после взятия крови прижигают огнем или раскаленным металлическим предметом. Кровь наносят на стекло толстым слоем и высушивают на воздухе без дополнительной фиксации.

Ухо отрезают с той стороны, на которой лежит труп. Предварительно его туго перевязывают шпагатом у основания в двух местах и отрезают между перевязками. Не снимая шпагата, отрезанное ухо завертывают в чистую тряпочку или марлю, пропитанную 3%-ным раствором карболовой кислоты, а затем обертывают целлофаном, полиэтиленовой пленкой или пергаментной бумагой и помещают в герметически закрытую посуду. Место отреза уха на трупе прижигают огнем.

Для исследования на сибирскую язву кожевенного сырья реакцией преципитации посылают кусочки кожи величиной 5 5 см в порядке, предусмотренном «Указаниями по ветеринарно-санитарной обработке заготовляемого кожевенного и мехового сырья».

21. Эмфизематозный карбункул и злокачественный отек. Для бактериологического исследования посылают в запаянных пипетках экссудат из воспаленного крепитирующего отека, а также препараты-отпечатки на предметных стеклах из пораженных частей мышц больных животных.

От трупов животных посылают кусочки печени, селезенки, почек и пораженных мышц в растворе глицерина (см. пункт 4) или же пересыпанные солью.

22. Брадзот овец. Для бактериологического исследования посылают кусочки печени, селезенки, мышц, подкожной клетчатки (если имеются отеки), содержимое тонких кишок, кусочки пораженных частей тонкого кишечника, сычуга и трубчатую кость.

Материал для бактериологического исследования берут только от свежих трупов.

23. Инфекционная энтеротоксемия овец. Для бактериологического и биологического исследований направляют содержимое тонкого отдела кишечника, перитонеальную жидкость, мезентериальные лимфатические узлы, паренхиматозные органы.

Материал для исследования следует брать сразу после гибели животного.

От больных животных для исследования на наличие токсина направляют фекалии (150-200 г).

24. Анаэробная дизентерия ягнят. Для бактериологического и биологического исследований посылают свежий труп ягненка или свежие неконсервированные пораженные части кишечника с содержимым, кровь из сердца и паренхиматозные органы.

25. Некробактериозы (некротические поражения конечностей, слизистой полости рта, внутренних органов). Для бактериологического и биологического исследований посылают омертвевший участок ткани, тщательно обмытый кипяченой теплой водой и высушенный ватным тампоном. Пораженную ткань соскабливают стерильной острой ложечкой вплоть до неизмененных слоев ткани, захватывая несколько и последние.

Из пораженных органов и тканей вырезают некротические участки вместе с прилегающей здоровой тканью.

26. Столбняк. Для бактериологического исследования из мест глубоких ранений берут кусочки ткани и раневой секрет.

27. Ботулизм. Для бактериологического и биологического исследований в лабораторию направляют содержимое желудка в объеме 100-200 мл и части паренхиматозных органов, а также пробы подозрительных кормов (силос, зерно, отруби, мясные и рыбные отходы и т.п.). Корма отбирают по нескольку проб из разных мест. Вес пробы не менее 100 г.

Патологический материал доставляют в термосе со льдом. Консервировать пробы нельзя.

Пробы кормов доставляют в светонепроницаемой таре, предохраняя от высыхания.

28. Туберкулез. При подозрении на туберкулез легких для бактериологического исследования берут мокроту из трахеи путем введения в нее стерильного ватного тампона на проволоке через трахеотубус.

При подозрении на туберкулез вымени для исследования берут молоко. При этом руки должны быть тщательно вымыты, продезинфицированы спиртом.

После предварительного обмывания и дезинфекции вымени 70%-ным спиртом первые порции молока (из подозрительной четверти вымени) сдаивают, а затем берут порции молока в начале, в середине и в конце дойки общим количеством 150-250 мл. Бутылку закрывают стерильной пробкой или стерильным ватным тампоном.

Для бактериологического исследования на туберкулез от убитых или павших животных посылают кусочки измененных органов и тканей со свежими, еще неинкапсулированными и необызвествленными поражениями. Взятый материал консервируют в 30%-ном стерильном водном растворе глицерина.

Трупы павших или убитых птиц для исследования на туберкулез направляют целиком.

Для гистологического исследования посылают кусочки пораженных органов и лимфатических узлов, фиксированные в 10%-ном растворе нейтрального формалина.

29. Паратуберкулез. Для прижизненной бактериологической диагностики паратуберкулезного энтерита берут кал от больных животных и извлекают из него обрывки слизистой оболочки, кусочки с кровью или комочки слизи. Отобранный материал помещают в стерильные пробирки или банки, закрытые корковыми, резиновыми или притертыми пробками. С той же целью у подозрительных по заболеванию (поносящих) животных берут соскобы со слизистой оболочки прямой кишки. Материал пересылают в лабораторию в пробирках.

Для посмертной бактериологической диагностики от трупа павшего или убитого животного в лабораторию направляют кусочки пораженного кишечника и измененные брыжеечные лимфатические узлы.

Для гистологического исследования другую часть того же материала консервируют в 10%-ном растворе нейтрального формалина (см. пункт 14).

Для серологической диагностики в лабораторию направляют кровь или сыворотку крови.

30. Бруцеллез. Для бактериологического исследования в лабораторию посылают: абортированный плод целиком с плодовыми оболочками или в исключительных случаях желудок плода с содержимым, перевязанный со стороны пищевода и двенадцатиперстной кишки, паренхиматозные органы плода и плодовые оболочки. В крайнем случае на исследование можно послать слизь и другие выделения из матки абортировавшего животного.

Кроме того, в лабораторию направляют содержимое гигром (бурситов), абсцессов, влагалищную слизь, молоко.

От убитых с диагностической целью животных направляют паренхиматозные и половые органы, вымя, мочевой пузырь, а также паховые, надвымянные, парааортальные, гипогастральные, подвздошные, аксилярные, предлопаточные, заглоточные, подчелюстные и мезентериальные лимфатические узлы. Если узлы парные, то направляют правый и левый.

Читайте также:  Когда кедровые орехи вымачиваешь они должны утонуть?

Для серологического исследования в лабораторию посылают кровь или сыворотку крови, а также молоко в количестве 5-7 мл.

31. Инфекционный эпидидимит. Для бактериологического исследования направляют: от баранов — гноеподобное содержимое секвестров придатков, при вскрытии — измененные участки семенников; от овец — выделения из половых органов (в первые дни после аборта), при вскрытии — содержимое полости матки, измененные некротические участки рогов матки, яичники, глубокие тазовые лимфатические узлы и абортированные плоды.

Для серологического исследования направляют в лабораторию кровь или сыворотку крови.

32. Вибриоз. Для бактериологического исследования в лабораторию направляют:

а) от коров, нетелей и овцематок: абортированный плод (целиком с плодовыми оболочками или от крупных плодов — голову, желудок, печень, селезенку, легкие), плаценту (или часть ее), а также стерильно взятую слизь шейки матки;

б) от быков и баранов: препуциальную слизь, сперму и секрет придаточных половых желез, взятые с соблюдением стерильности;

в) от животных, убитых с диагностической целью, — влагалище, матку, лимфатические узлы тазовой полости.

Для исследования по РА берут цервиковагинальную слизь неоднократно перегуливающих коров и телок, не имеющих выделений из влагалища (гноя, крови и т.д.).

Материал для исследования на вибриоз берут в соответствии с «Временной инструкцией о мероприятиях по диагностике, профилактике и ликвидации вибриоза крупного рогатого скота и овец» от 5 марта 1971 г.

Патологический материал доставляют в лабораторию в закрытой таре со льдом.

При отправке абортированных плодов следует иметь в виду, что они пригодны для исследования лишь в первые 10-12 часов после аборта. При необходимости плоды замораживают и отправляют не позже чем через двое суток после аборта.

Пробы спермы, секрета, препуциальной и влагалищной слизи, полученные от животных, транспортируют в термосе со льдом и доставляют в лабораторию в течение 6 часов после взятия.

33. Сап. Для серологического исследования методом реакции связывания комплемента в лабораторию посылают сыворотку крови или цельную кровь подозрительного по заболеванию сапом животного.

Для гистологического исследования от павших и убитых животных посылают пораженные участки (узелки) кожи, легких и других паренхиматозных органов и лимфатические узлы, законсервированные в 10%-ном растворе нейтрального формалина.

34. Лептоспироз. Для бактериологического исследования в лабораторию направляют цитрированную кровь, ликвор, мочу, кусочки свежих неконсервированных органов (печени, почки и др.).

Для гистологического исследования на наличие лептоспир от павших животных берут кусочки печени, почек, лимфатических узлов и мышц сердца.

При подозрении на заболевание животных лептоспирозом посылают мазки периферической крови от больных и павших животных для исследования с целью исключения пироплазмоза.

При необходимости серологического исследования посылают кровь или сыворотку ее в пробирках.

35. Рожа свиней. Для бактериологического и биологического исследований лучше послать свежий труп с целью исключения чумы, пастереллеза, паратифа и других болезней. При невозможности переслать весь труп для бактериологического исследования направляют:

а) трубчатую кость и пораженные суставы, очищенные от мышц;

б) кусочки пораженной кожи, селезенку, почку и сердце.

36. Листериоз. Для бактериологического и биологического исследований посылают: свежие трупы поросят (не позднее 24 часов после их смерти) или паренхиматозные органы и голову; от трупов лошадей, крупного рогатого скота и овец — головной мозг и части всех паренхиматозных органов.

Для серологического исследования направляют кровь или сыворотку в пробирках, а при наличии маститов — молоко из пораженных долей вымени.

В случае абортов в лабораторию направляют абортированный плод.

37. Пастереллез (геморрагическая септицемия) крупного рогатого скота, овец, свиней, кроликов, птиц. Для бактериологического исследования посылают:

а) от больных животных — кровь, стерильно взятую из вены в пробирку;

б) от трупов — кровь из сердца (в запаянных пипетках), части паренхиматозных органов и трубчатую кость;

в) целые трупы птиц, кроликов и других мелких животных.

38. Псевдотуберкулез овец. Для бактериологического исследования в лабораторию направляют пораженные внутренние органы и увеличенные в объеме лимфатические узлы.

39. Туляремия. Для бактериологического исследования направляют кусочки селезенки, увеличенные лимфатические узлы, законсервированные в растворе глицерина или в смеси стерильного вазелинового масла (25 мл) с парафином (2,5 мл).

Трупы мелких животных направляют в лабораторию целиком.

40. Сальмонеллезы. Для бактериологического исследования в лабораторию направляют свежие трупы мелких животных или паренхиматозные органы (печень с желчным пузырем и лимфатическими узлами, селезенку, почку), мезентериальные лимфатические узлы, трубчатую кость, а в случае аборта — плод с плодовыми оболочками и околоплодной жидкостью.

В целях выявления бактерионосителей направляют фекалии для бактериологического исследования и кровь или сыворотку крови для серологического исследования по РА.

Не рекомендуется брать материал в период применения антибиотиков.

Для обнаружения сальмонелл отбор проб кала следует делать после дефекации из последней порции испражнений. При наличии в фекалиях крови, слизи, гноя, пленок их необходимо включить в пробу.

Если невозможно быстро доставить фекалии в лабораторию, их помещают в пробирку с консервирующим раствором. В качестве консерванта лучше всего применять глицериновую смесь или буферный раствор фосфорнокислых солей (рН 8,0). Количество помещенных фекалий должно составлять объема консерванта.

41. Колибактериоз. Для посмертной диагностики в лабораторию направляют свежий труп или патологический материал (сердце, паренхиматозные органы, трубчатую кость, голову и мезентериальные лимфатические узлы).

Для прижизненной бактериологической диагностики направляют фекальные массы от больных животных, взятые из прямой кишки в стерильные пробирки.

42. Колисептицемия птиц. Для исследования в лабораторию направляют больных птиц.

43. Диплококковая септицемия. Для бактериологического исследования направляют свежий труп или патологический материал: кровь из сердца (в запаянных пипетках), селезенку, печень, лимфатические узлы, пораженный сустав, трубчатую кость, головной мозг.

При заболевании коров, овец, свиней метритами направляют в стерильных пробирках ватные тампоны с истечением из половых органов, при маститах — молоко из пораженных долей вымени.

Зимой материал можно посылать замороженным. Необходимо иметь в виду, что в материале, сохраняемом в теплом месте (при 16-20°), диплококки лизируются в течение 24-30 часов.

44. Мыт. Материалом для исследования служит гной из невскрывшихся абсцессов лимфатических узлов. Гной берут стерильно при помощи шприца после обработки места прокола. В лабораторию гной доставляют в стерильной пробирке в неконсервированном виде. Если абсцессы уже вскрылись, то гной берут из носового истечения и вскрывшихся абсцессов ватным тампоном, увлажненным 25%-ным водным раствором глицерина.

В случае гибели лошадей направляют голову, кровь из сердца, кусочки селезенки, легких и других пораженных органов.

45. Респираторный микоплазмоз птиц. В лабораторию направляют 5-6 свежих трупов или больных птиц или 5-6 погибших эмбрионов.

46. Инфекционная плевропневмония коз. Для серологического исследования по РСК направляют сыворотку крови. Для биологического исследования — пораженные участки легких или экссудат.

47. Маститы. Для прижизненного бактериологического исследования направляют в стерильной посуде три порции молока, которое берут из пораженной доли вымени (первую в начале, вторую — в середине, третью — в конце доения), не менее 2 мл в каждой порции, а при наличии абсцессов — гной из них (путем пункции) и гнойные выделения из пораженных частей вымени.

Для посмертного исследования посылают пораженные части: лимфатические узлы вымени, легких; гной, взятый из абсцессов в кишечнике, печени; суставах, грудной полости и т.д.

48. Инфекционная агалактия. Для бактериологического исследования направляют молоко, выделения из пораженного глаза, жидкость из суставов и отеков. От трупов павших или вынужденно убитых животных берут паренхиматозные органы и лимфатические узлы.

49. Бешенство. Для исследования направляют в лабораторию с нарочным: свежий труп или голову собаки (кошки, лисицы, песца, овцы, теленка и др.), от крупных животных — голову или головной мозг — свежий (для серологического исследования неконсервированный) или консервированный в 30-50%-ном растворе глицерина.

50. Ящур. Для исследования с целью определения типа (или варианта) возбудителя посылают патологический материал (стенки ящурных афт) от 2-3 больных в количестве не менее 5 г. Афты берут свежие, созревшие, непрорвавшиеся, плотной консистенции, не издающие гнилостного запаха (см. «Указание по сбору, консервировке и пересылке ящурного вируса для определения его типа» от 27 августа 1968 г.).

51. Болезнь Ауески. Для биологического исследования посылают: голову, головной мозг или же часть его (продолговатый мозг), кусочки селезенки, печени, легкого в стерильном чистом глицерине или в насыщенном растворе поваренной соли.

52. Ку-лихорадка. Для исследования по РСК направляют: пораженные легкие, селезенку, плаценту в глицерине (см. пункт 5), а также кровь и секреты животных.

53. Оспа. Для исследования направляют: снятые оспенные поражения, а от трупов — части пораженной кожи, оспенную лимфу, полученную из оспенных поражений кожи.

54. Инфекционная анемия лошадей. Для гистологического исследования направляют кусочки печени, селезенки, легких, почек, сердца (предсердий и желудочков) размером 2 2 см, заключенных в пластмассовую, стеклянную или глиняную посуду; для гематологического исследования — стабилизированную оксалатом или цитратом натрия кровь и мазки крови (для выведения лейкограммы).

55. Инфекционный знцефаломиелит лошадей. Для гистологического исследования направляют отдельные участки головного мозга (амониева рога, мозжечка, четыреххолмия, продолговатого мозга), кусочки печени, селезенки, почек, стенки предсердия и желудочка сердца.

Материалы берут от свежих трупов и посылают в стеклянной или глиняной посуде (не металлической).

56. Грипп лошадей. Направляют легкие, трахею, бронхиальный экссудат, смывы из носовой полости больных животных для постановки биопробы и выделения вируса в культуре клеток с помощью реакции гемадсорбции.

57. Африканская чума однокопытных. Для исследования с целью исключения возбудителей бактериальных инфекций направляют: кусочки паренхиматозных органов, а также кровь (на РСК), молоко, мочу и тканевые жидкости (экссудат) от больных и подозрительных по заболеванию животных.

58. Чума крупного рогатого скота. Для исследования по реакции диффузионной преципитации направляют: предлопаточные и мезентериальные лимфатические узлы, селезенку, печень павших или убитых животных, а для исследования по РСК — кровь от больных и подозрительных по заболеванию животных.

59. Контагиозный пустуллезный стоматит овец (контагиозная эктима). Для биологического исследования направляют: везикулы, корки, струпья, некротические участки кожи, слизистых оболочек, паренхиматозных органов в глицерине (см. пункт 5) и содержимое везикул.

60. Вирусный (энзоотический) аборт овец и коз. Для биологического исследования направляют: пораженные участки плаценты, паренхиматозные органы абортированных плодов и выделения из половых органов, а для серологического исследования кровь или сыворотку крови от больных животных.

61. Чума свиней. Для исследования с целью исключения возбудителей бактериальных инфекций направляют: трупы поросят, паренхиматозные органы, мезентериальные, подчелюстные, бронхиальные лимфатические узлы, трубчатые кости, толстый отдел кишечника, а также от больных животных для гематологического исследования мазки крови или стабилизированную кровь.

62. Африканская чума свиней. Для исследования с целью исключения, возбудителей бактериальных инфекций направляют: селезенку, лимфатические узлы от павших или убитых животных. От больных животных — стабилизированную кровь (для исследования по реакции гемадсорбции).

63. Инфекционный энцефаломиелит свиней (болезнь Тешена). Для исследования направляют: трупы поросят, головной и спинной мозг, паренхиматозные органы в 30%-ном растворе глицерина на физиологическом растворе — для биологического исследования и в спирт-ацетоне (поровну) — для гистологического.

64. Вирусная пневмония свиней. Направляют пораженные участки. легких, регионарные лимфатические узлы для биопробы и такой же материал, зафиксированный в формалине, для гистологических исследований.

65. Болезни птиц (псевдочума, оспа-дифтерит, нейролимфоматоз, спирохетоз, лейкоз). Для исследования направляют свежие трупы птиц. При спирохетозе — от больных и подозрительных по заболеванию направляют тонкие, нефиксированные мазки крови.

66. Орнитоз птиц. Для исследования направляют: трупы птиц, паренхиматозные органы, экскременты и содержимое кишечника. Для серологического исследования — кровь или сыворотку.

67. Инфекционный ларинготрахеит птиц.

Ознакомиться с документом вы можете, заказав бесплатную демонстрацию систем «Кодекс» и «Техэксперт».

источник

В своей практической деятельности ветеринарным специалистам при выполнение плана противоэпизоотических мероприятий, а также при исключении тех или иных инфекционных заболеваний приходится проводит взятие проб крови от животных. При этом у лошадей, крупного рогатого скота, верблюдов, оленей, овец и коз кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи. Иглы для взятия крови обязательно стерилизуются кипячением. Кровь берется от каждого животного отдельной иглой. В последние годы забор крови от животных проводится вакуумными пробирками или одноразовыми шприцами из подхвостовой вены.

1. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригается, кожа дезинфицируется 70% спиртом.

2. При взятии крови специалист должен следить, чтобы кровь стекала по стенке пробирки струей, а не каплями. Кровь, взятая каплями и вспененная, скорее гемолизируется и часто дает неправильные результаты показаний при исследовании. Во время взятия крови ветспециалист должен следить, чтобы кровь не попадала в кормушку и на землю. Для этого ветспециалист при взятие крови из вены должен пользоваться тазиком с дезинфицирующей жидкостью, куда спускают первую порцию крови.

У свиней кровь берется из уха (иглой или шприцем) или из кончика хвоста. Хвост перед взятие крови обмывают водой с мылом и дезинфицируют 70% спиртом, затем кончик отрезают ножницами. После взятия крови кончик хвоста обрабатывают йодом, перевязывают или прижигают.

У птиц кровь берут из вены крыла или гребешка. Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животного.

3. Объем: Для серологического исследования от крупных животных кровь берут в количестве 7-10мл, а от мелких животных в объеме 2-4мл.

4. Взятую кровь выдерживают около часа при температуре 30-35 градусов для свертывания, а затем выносят в прохладное помещение для отстаивания.

5. Сроки доставки: сыворотка крови должна быть доставлена в ветлабораторию, в течение первых суток. И в исключительных случаях не позднее третьего дня после ее взятия.

6. При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом ее необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9мл сыворотки 1мл раствора карболовой кислоты или 1-2капли раствора на 1мл сыворотки.

Читайте также:  Астильба цветы сколько цветет период

Сыворотку можно консервировать также высушиванием. Для высушивания сыворотку наносят на фильтровальную бумагу размером 5*5см в количестве 0,4мл и выдерживают в комнате при рассеянном свете до полного высыхания. После этого на каждой бумаге с высушенной сывороткой делают соответствующие записи карандашом и завертывают в пергаментную бумагу (каждую пробу отдельно), а затем упаковывают в конверт и в таком виде отсылают в лабораторию.

7. Для серологического исследования в лабораторию особенно от вблизи расположенных хозяйств можно отправлять и цельную кровь, не отделяя сыворотку, но при условии, что в пути ее не будут встряхивать и она не подвергнется гемолизу.

8. Маркировка: на каждой пробе сыворотки крови или крови указывают ее порядковый номер, инвентарный номер животного (кличку животного, фамилию владельца животного).

9. Оформление: к сопроводительному письму на пробы крови, направляемые в плановом порядке для серологического или гематологического исследования, прилагается опись проб в 2-х экземплярах. Смотри приложение №1. (doc)

10. Упаковка и транспортировка: Пробирки с кровью или сывороткой плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении (на лицевой стороне посылки вверху должна быть надпись «осторожно-стекло!» и «Верх»). Зимой кровь и сыворотку упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзали.

источник

Безопасные методы отбора проб крови у свиней. Постановка правильного диагноза — одна из важнейших составляющих в мероприятиях по профилактике и борьбе с заболеваниями животных.

Попадая в организм хозяина, возбудитель независимо от патогенности запускает механизмы гуморальной (продукции антител) и клеточной защиты. Образующиеся специфические антитела попадают главным образом в кровь, и там их можно определить с помощью серологических реакций в течение периодов разной продолжительности, при некоторых инфекциях — в течение всей жизни животного.

Исследование сыворотки с соответствующим лабо-раторным диагностическим антигеном дает реакцию при условии, что сыворотка содержит специфические антитела. Определение антител к данному возбудителю доказывает лишь наличие контакта исследуемого объекта с этим агентом и ничего не говорит о том, когда этот контакт имел место (неделю, год или много лет назад) и каков был его характер — перенесение заболевания, инфекция без клинических проявлений или, наконец, вакцинация. Таким образом, серологическое обследование больного субъекта даже в случае определения высоких титров антител к определенному возбудителю не всегда позволяет утверждать, что именно этот возбудитель является причиной наблюдаемого заболевания. Оно может быть вызвано совершенно другим микроорганизмом или паразитом, а присутствие антител в сыворотке служит доказательством перенесенного в прошлом заражения, например бессимптомного, что может в некоторых случаях обусловливать невосприимчивость как раз к этому же заболеванию.

В большинстве случаев диагностическая ценность серологических реакций зависит от уверенности в том, что обнаруженные антитела появились в ответ на текущее заражение или при правильно выполненной программы вакцинации.

В хозяйстве, с учетом анамнеза, клинических и патологоанатомических данных можно установить предварительный диагноз заболевания, но окончательный диагноз заболевания устанавливается в основном при наличии данных лабораторных исследований. Для получения более достоверного диагноза желательно исследовать парные пробы сывороток крови, что позволит выявить нарастание титра антител и свидетельствовать о свежем заражении животного. Первый раз кровь берут как можно раньше после обнаружения заболевания (желательно — в течение первых 4-5 дней после появления первых симптомов или возникновения первых подозрений), второй раз — спустя 14 дней. Диагностическая лаборатория сохраняет присланные первые образцы сыворотки крови, взятой в острой фазе болезни, в замороженном состоянии до получения второй сыворотки, взятой в период реконвалесценции, и только тогда может быть поставлена серологическая реакция, так называемое исследование парных сывороток (каждая пара должна быть взята от одного животного).

Положительным результатом реакции, указывающим на течение острого процесса заражения данным возбудителем, является четырехкратное увеличение титра антител за период между первым и вторым взятием проб крови на исследование. Применение в реакции постоянной дозы сыворотки и изменяющегося количества возбудителя должно дать рост индекса нейтрализации не менее 1,7-2,0 lg, что соответствует 50-100-кратному возрастанию титра.

Если первая проба взята слишком поздно, то титр антител может достигнуть такого уровня, что второе исследование не выявит четырехкратного возрастания титра. Если же взять вторую пробу слишком рано (интервал между пробами должен быть не менее 10 дней), титр антител не успевает достигнуть максимального уровня, и разница вновь окажется слишком незначительной. Это говорит о том, что вовремя и правильно отобранные пробы крови от животных — залог правильного диагноза заболевания.

Отбор крови из яремной вены у мелкого и крупного рогатого скота не представляет затруднений для ветеринарных специалистов. Поэтому мы хотим обратить внимание на методы отбора крови у свиней, общие правила, их недостатки и преимущества.

При отборе крови необходимо руководствоваться принципом «не навреди себе, животному, окружающей среде» и обеспечить лабораторию качественным материалом для постановки достоверного диагноза. Работа должна выполняться согласно правилам гуманного обращения с животными в соответствии с руководством по здоровью и защите животных.
У свиней кровь отбирают из сосудов ушной раковины; кончика хвоста; глазного синуса; передней полой вены.

1) Свинья должна быть надежно зафиксирована за верхнюю челюсть с помощью веревочной петли или петли из гибкого тонкого тросика, что обеспечит безопасность берущего кровь и предохранит от травмы свинью (рис. 1);

2) Вся посуда и инструменты должны быть стерильными;

1) Врач должен владеть методами отбора крови и исключать контакт с кровью во время взятия и приготовления сыворотки;

2) Нельзя допускать попадания крови на пол, на персонал и тело свиньи с целью предупреждения распространения возможной инфекции;

3) Во избежание нежелательной контаминации крови микрофлорой кожу на месте взятия крови необходимо очистить от грязи и продезинфицировать 70% спиртом или 5% настойкой йода;

4) Остановить вытекание крови прижиганием раны порошком сухого марганцовокислого калия или наложением лигатуры, которую потом необходимо снять;

5) Получить качественную сыворотку крови, пригодную для исследования и получения достоверного результата.

Кровь отбирают в стерильные пробирки, шприцы или специальные одноразовые шприцы типа «Моновет». Для лучшего отстаивания сывороток стенки традиционно используемых пробирок и шприцов до взятия крови необходимо увлажнить стерильным физраствором.

«Моновет» — это готовая к употреблению закрытая система взятия крови, состоящая из шприца-пробирки и иглы. В игле и шприце-пробирке устроены клапаны, предотвращающие вытекание крови при отсоединении иглы от шприца-пробирки, что снижает риск инфицирования окружения. В самом шприце-пробирке находятся пластиковые шарики с нанесенным активатором свертывания крови (или наоборот, в зависимости от модели и цели взятия крови), благодаря чему кровь быстро свертывается и образуется четкая граница между сгустком и сывороткой. Устройство можно применять для вакуумного или шпри- цевого метода отбора крови. При отборе в шприц-пробир- ку набирается постоянное количество крови, что позволяет центрифугировать кровь в «Моновете» без уравновешивания. Также система «Моновет» является прекрасным транспортным контейнером.

Для взятия крови из ушной вены сначала подготавливают поверхность кожи уха. Для этого удаляют грязь, выстригают щетину и дезинфицируют место прокола. Вокруг уха накладывают резиновый жгут, который необходимо снять после завершения процедуры взятия крови. Для взятия крови иглу № 16 вводят в вену, отбирают кровь в шприц и переливают в стерильную пробирку (рис. 2). Отбор крови в пробирку методом разрезания уха применяться не должен.

Рис. 2. Взятие крови из ушной вены

Для взятия крови из сосудов хвоста кончик хвоста обмывается и дезинфицируется 70% раствором спирта или 5% раствором йода. Кончик хвоста отсекают скальпелем (рис. 3) и берут необходимое количество крови в пробирку. После окончания процедуры на хвост накладывают лигатуру, прижигают 5% раствором йода или сухим порошком марганцовокислого калия. Через 1-2 часа необходимо удалить лигатуру с хвоста для предупреждения возможного некроза тканей.

Рис. 3. Взятие крови из сосудов хвоста

Образцы крови могут быть получены из глазного синуса свиней (рис. 4). Взрослых свиней надежно фик-сируют стоя, а поросят-сосунов удерживают одной рукой в горизонтальном положении. Кончик иглы, соединенной со шприцом, вводят непосредственно в ткани мигательной перепонки. При введении Иглу необходимо направлять вниз с небольшим нажимом, наклоняя внутрь. Иглу продвигают вперед на 2-4см, пока она не попадет в венозный синус, который примыкает к костной глазной впадине (схема 3). Срез иглы должен быть направленным в сторону кости. При прокалывании тканей синуса кровь начнет вытекать из иглы. При необходимости повторное взятие крови рекомендуется проводить через 10-12 дней.

Рис. 4. Взятие крови из глазного синуса

Отбор крови возможен и из передней полой вены.
У больших свиней кровь берут в положении стоя. Для этого иглу длиной 6 см направляют справа или слева от киле- видного хряща грудины на линии, проведенной от месторасположения хряща к основанию уха. Иглу направляют внутрь, вверх и обратно (схема 1).

Схема 1. Взятие крови из передней полой вены у больших свиней, зафиксированных в положении стоя

Для отбора крови в положении свиньи на спине (схема 2) иглу 20-го размера длиной 3,8 см направляют внутрь, вниз и обратно до тех пор, пока она не попадет в вену внутри дугообразного образования между двумя первыми ребрами.

Схема 2. Взятие крови из передней полой вены у крупных свиней, зафиксированных в положении на спине (А — анатомия вентрального шейного отдела свиньи; 1 -грудина; 2 — внешняя яремная вена; 3 -лицевая вена; 4 — челюстной край; 5 — верхнечелюстная вена; В -место введения иглы шприца для взятия крови).

Схема 3. Взятие крови из глазного синуса свиней
(1 — боковой угол глазной щели — нижнее веко; 2 — средний угол глазной щели — нижнее веко; 3 — игла для взятия крови после введения ее в глазничный венозный синус; 4 — третье веко и его лимфатический узел (окружающий хрящ); 5 — глазничный венозный синус; 6 — глубоко расположенный лимфатический узел третьего века; 7 — срединная костная стенка глазного синуса; 8 — зрительный нерв; 9 — обонятельная луковица; 10 -решетчатая кость и носовые раковины; 11 — дополнительная точка для взятия крови).

Автор: Вабишевич Ф.С., Дудников Л.A., НПП «Био-Тест-Лаборатория»

источник

В.В. Пругло, к.в.н., Руководитель отдела технического сервиса ООО «Сева СА», Россия

С.В. Палазюк, к.в.н., Главный ветеринарный врач ООО «ПсковАгроИнвест»

А.Н. Гречухин, к.в.н, Член экспертно-консультационного совета при НСС

Практические врачи свиноводческих хозяйств часто сталкиваются с процедурой отбора образцов крови от свиней для проведения лабораторной диагностики. К сожалению, практика показывает, что зачастую в свиноводческих хозяйствах не все специалисты владеют этой процедурой и порой испытывают сложности при необходимости её практической реализации.

В обзоре рассматриваются несколько методик взятия образцов крови от свинейразличных возрастных групп, легко осваиваемых и реализуемых на практике.

Таблица 1

Место отбора Методика Возраст/размер животного Комментарии
Ушные вены 1.Вскрытие скальпелем и отбор в пробирку

2.Шприцом, игла калибра ≥ 20G

· Все возраста

· Легко

· Небольшой объем образца

· Контаминация образца

· частокровоизлияния

Хвостовые сосуды 1. Шприцом

2.Вакуумной пробиркой

3.Надрезом/ампутацией хвоста

· Свиноматки

· Свиньи откорма

· Поросята

· Легко

· Небольшой объем образца

· От поросят:

0,5 мл

Ярёмная вена 1. Шприцом

2. Вакуумной пробиркой

· Все возраста · Легко

· Образец:20-30 мл

Наружная или внутренняя яремные вены

Верхняя полая вена

1. Шприцом

2. Вакуумной пробиркой

· Все возраста · Легко

· Образец: >20 мл

Образцы крови от взрослых свиней чаще всего отбирают из поверхностной яремной вены. Животное должно быть зафиксировано верёвкой, или фиксатором за верхнюю челюсть,а шея вытянута вверх. При этом желательно, чтобы животное стояло на всех четырёх конечностях. Верёвка затягивается, с таким расчётом, чтобы она не соскальзывала и не перемещалась по направлению к носовому хрящу, поскольку сдавливание этой области некомфортно для свиней. Животное будет пытаться двигаться назад и затянет верёвку в достаточной степени. Такимобразом, после затягивания петли нетнеобходимостиблокироватьдвижениесвиньивперёд( рис.4).

Фиксация подсвинка за верхнюю челюсть
Рисунок 4

Постановка и удержание животного в правильной позиции являются важными элементами быстрого и лёгкого отбора образца крови. При достаточном практическом навыке специалиста процедура не занимает более 1-2 минут.

Поверхностная яремная вена пролегает на глубине 25-40 мм от поверхности кожи. Правильная область венопункции (прокола вены), находится приблизительно в 120 мм выше точки плечевого сустава и расположена в самой глубокой точка яремного жёлоба, сформированного медиальной грудино-головной (sternocephalic) и латеральной плечеголовной (brachiocephalic) мышцами (рис.5). На рисунке 5эта область помечена(крупный план, сбоку) чёрной точкой.Игла должна быть направлена каудо-дорсально и в этом случае – перпендикулярно коже. Оператору-правше, как правило, удобнее проводить пункцию правой яремной вены.

Игла вводится навсюдлинуик иглодержателю присоединяетсявакуумнаяпробирка. Жироваяткань, лежащаяповерхвены, должнабытьслегкаприжата. При попадании иглы в вену кровь начнёт поступать в пробирку. На рисунке 6вакуумнаяпробиркасиглойудерживаетсятолькоуказательнымпальцемоператора для наилучшейдемонстрацииметодикиотбора. Вдействительностиигла с пробиркойдолжныбытьзафиксированыболеекрепко.

Место пункции при взятии крови из яремной вены
Рисунок 5

Взятие крови из яремной вены
Рисунок 6

При необходимости смены вакуумной пробирки необходимо крепко удерживать иглодержатель. Оператор удерживает иглодержатель левой рукой, одновременно осторожно надавливая на шею свиньи. Правая рука используется для смены пробирки.Подобная методика также используется для отбора образцов крови у подсвинков массой 20-50 кг. На рисунке 6 показана процедура у животного массой около 40 кг.

Настоятельно рекомендуется не перемещать иглу из стороны в сторону после введения в ткани, поскольку это может привести к серьёзным повреждениям сосудов, кровотечению и смерти (у поросят). При неправильном введении иглы или потере сосуда, рекомендуется:

· отсоединить вакуумную пробирку;

· вынуть иглу из тканей

· ввести иглу в ткани под другим углом

· подсоединить вакуумную пробирку

источник